HCS高内涵细胞筛选

针对基因的功能研究，通常会遇到两种情况的问题： 一种情况是一个基因一个基因的进行，效率低，往往要做好几个基因才能找到功能明显和确定的基因。

MTT/MTS/CCK8

反映细胞增殖情况；通常连续检测5天，获得细胞增殖曲线；检测细胞增殖最经济常用的方法，MTT只适用于贴壁细胞，MTS/CCK8可用于悬浮细胞。

Brdu/EdU

可代替胸腺嘧啶在DNA合成期（S期），活体注射或细胞培养加入，而后利用抗BrdU单克隆抗体，ICC染色，显示增殖细胞。同时结合其它细胞标记物，双重染色，可判断增殖细胞的种类，增殖速度，对研究细胞动力学有重要意义。

流式细胞周期检测

通过流式细胞术检测PI荧光强度直接反映细胞各时相的DNA分布状态，从而计算出各时相的百分率。

流式细胞凋亡检测

吉凯基因可根据客户选择或细胞外源表达的荧光类型，相应提供Annexin V单染或Annexin V & PI双染凋亡检测，满足不同的实验需求。

Tunel检测

TUNEL是一种经典的细胞凋亡检测方法，凋亡细胞会发生DNA双链断裂，从而在断裂处暴露出3’-OH基团，利用荧光/化学基团标记的dUTP与3’OH基团结合后，可通过荧光成像/染色反应指示凋亡细胞。

Caspase 3/7检测

Caspase3/7的活性是细胞凋亡指示剂，通过检测其活性强弱，判断细胞凋亡情况。

平板克隆形成

待细胞形成单克隆后染色计数，通过计数克隆形成率，可对单个细胞的增殖潜力做定量分析，了解细胞的增殖能力和独立生存能力，平板克隆形成可用于检测贴壁细胞。

软琼脂克隆形成

悬浮细胞克隆形成检测可使用软琼脂克隆形成实验。

划痕愈合实验

在体外培养的单层细胞上，划痕致伤，然后以低浓度血清（0.5%）培养基培养，检测细胞一定时间后划痕愈合情况，从而反映细胞转移能力。

Transwell 转移实验

Transwell小室上室为无血清细胞悬液，下室为含血清的培养基，利用细胞对血清中的某些细胞因子的趋向性促使细胞向下室转移，计数进入下室的细胞量可反映细胞转移能力。

Transwell 侵袭实验

在Transwell小室间增加基质胶(ECM)，细胞进入下室需要先要分泌基质金属蛋白酶(MMPs)将基质胶降解。计数进入下室的细胞量可反映细胞的侵袭能力。

EMT分子marker检测

通过Western Blot的方法检测细胞中EMT marker蛋白表达量，判断EMT过程的变化，从而反映细胞转移能力和侵袭能力变化。

血管形成实验

肿瘤血管生成是一个极其复杂的过程，一般包括包括血管内皮基质降解、内皮细胞移行、内皮细胞增殖、内皮细胞管道化分支形成血管环和形成新的基底膜等步骤。越来越多的研究表明，良性肿瘤血管生成稀少，血管生长缓慢；而大多数恶性肿瘤的血管生成密集且生长迅速。因此，血管生成在肿瘤的发展转移过程中起到重要作用，抑制这一过程将能明显阻止肿瘤组织的发展和扩散转移。

外泌体标志物鉴定

通过WB检测外泌体经典蛋白标志物（CD9/CD63/TSG101）用以鉴定是否分离到的产物是外泌体。

电镜鉴定

使用电镜来分析其大小和形态，来判断分离出来的是否是外分泌体以及纯度。

内吞实验

通过标记外泌体后，检测靶细胞内吞外泌体的情况。

皮下成瘤

将肿瘤细胞接种于裸鼠皮下，通过观察裸鼠体内肿瘤的形成情况，从而评价出细胞的增殖能力；肿瘤方向研究的经典方法，常用于肿瘤细胞增殖能力的检测。

肝原位模型

肝原位模型通过将肝癌组织块直接在小鼠肝脏进行移植，建立肝癌原位模型，相对皮下成瘤模型，更加模拟肝癌的实际生长情况。

脾脏转移模型

尾静脉转移模型

Western Blot

利用抗原抗体反应，检测样本中目的蛋白表达量；检测基因蛋白表达量最常用的方法，半定量，无法提供基因的细胞定位等信息。

ELISA

利用抗原抗体反应，检测样本中目的蛋白的浓度，常用于分泌蛋白的检测；可通过同批检测标准品，定量计算得到各实验组目的蛋白含量。

流式检测

荧光标记抗体孵育细胞后，利用流式细胞检测仪比较不同条件处理的实验组之间细胞表面蛋白的表达差异，是检测膜蛋白表达的首选，吉凯提供多达4色标记检测。